IPS诱导肠类器官的培养过程主要分为三个阶段:人多能干细胞的培养、内胚层分化及中/后肠模式化诱导、类器官培养。本文将重点讨论第三阶段——类器官培养(14-28天)。

一、准备工作
实验所需的试剂和耗材包括人正常肠类器官培养试剂盒、低因子、无酚红的基质胶、15ml离心管、EP管、24孔细胞培养板以及金属冰盒等。以下是必要的组分和规格:
- 类器官培养基 A: 100ml
- 类器官原代培养缓冲液 B: 250ml
- 原代组织消化液 C: 30ml
- 类器官传代消化液 D: 30ml
- 组织保存液 E: 100ml
- 类器官冻存液 F: 20ml
- 类器官传代培养缓冲液 G: 250ml
二、操作流程
1. 加胶-点板-加液
该步骤是整个原代操作的关键。操作如下:
- 准备工作:将基质胶放入金属冰盒中,置于4℃冰箱中融化过夜。枪头和离心管需在-20℃预冷至少半小时。融化后的基质胶需在4℃储存,建议2周内使用完。
- 接种要求:在24孔板中,每孔加入25μl的基质胶球状体混合物和500-750μL的类器官培养基。
- 接种密度建议:基质胶与球状体的体积比为25:1,若难以判断球状体的沉淀体积,可以使用300μl基质胶。对于需要计数接种的情况,建议保持500个球状体/25μl基质胶。
- 加胶:将基质胶加入细胞团沉淀中,轻柔吹打混匀,然后进行点板。整个操作应在金属冰盒或冰上进行,以保持基质胶的流动性。
- 加液:将铺好的培养板放入37℃培养箱中,等待40-60分钟成胶,然后添加500-750μl的类器官培养基A进行培养,通常在10-14天内,类器官直径达200μm-500μm后可进行传代操作。
2. 传代操作
对于类器官数量较多或体积较大的情况,传代步骤如下:
- 类器官收集与洗涤:吸去培养基,向每孔添加4℃的类器官传代培养缓冲液G,轻柔吹散基质胶,收集于15ml离心管中。
- 洗涤:将类器官传代培养缓冲液G加至14ml,静置40min(或-20℃放置5min)使基质胶软化,然后进行离心。
- 类器官消化:可添加类器官传代消化液,轻轻吹打,使细胞团保持,避免转化为单细胞。
- 重复上面操作,如有基质胶残留,按上面的洗涤步骤处理。
三、冻存与复苏
冻存和复苏类器官时需注意:
- 选择在类器官指数增长期进行冻存,通常在传代后的第3-4天进行操作。
- 收集类器官,用缓冲液洗涤,然后进行离心,使细胞与基质胶分离。
- 使用F冻存液重悬类器官,进行梯度冻存。
复苏时,将冻存管迅速放入37℃水浴锅中解冻,然后加入类器官传代培养缓冲液G重悬,轻柔混匀后进行点板培养。通常,再次传代的类器官在10-14天内可达到200μm-500μm的直径。
关键注意事项
进行极为小心的无菌操作,确保减少污染风险。同时,遵循上述步骤并不断进行优化,可以有效生成功能性的人类肠道类器官,适用于疾病建模和药物筛选等研究领域。我们提倡在实验中使用尊龙凯时的优质试剂,确保实验结果的可靠性。
常见问题与解决
如果实验中遇到问题,欢迎与我们进行讨论交流。通过不断优化操作细节,您也能获得令人满意的实验结果。